帶您了解一下原位雜交檢測步驟
　　原位雜交涉及的步驟：玻片的準備和樣品固定，細胞或組織的預滲透處理，靶DNA變性（DNA原位雜交），探針制備，原位雜交過程，雜交后洗滌，探針（顯色）檢測。
　　1.玻片的準備和樣品固定
　　對于染色體涂片，1：1的乙醇/醚處理的載玻片已能符合要求。對于組織切片的原位雜交，為了在實驗過程中不丟失組織樣品，可使用多聚賴氨酸或鉻礬明膠包被的載玻片。
　　樣品的固定步驟是為了保持樣品的原有形態學。樣品固定是原位雜交中必不可少的步驟，從化學反應角度來看，固定劑的使用和選擇對后續雜交的影響不會太大，因為核酸雜交的功能分子基團被安全地包裹在DNA雙螺旋結構中，而交聯劑的使用對RNA基本沒有影響。對于染色體涂片，常使用甲醇/醋酸溶液固定；石蠟包埋的組織切片用福爾馬林固定。冷凍切片可通過在4%的甲醛溶液中固定30min，或使用Bouin固定劑。
　　2.樣品預處理
　　在待測樣品中，DNA或RNA通常都是被蛋白包裹纏繞，根據不同的細胞和組織樣品的應用，可選擇合適的預處理方法將靶核酸暴露：
　　內源性酶滅活：如果探針的檢測是通過酶促法進行的，則樣品內相應的內源性酶必須被滅活。如內源性的POD可通過含1%H2O2的甲醛溶液處理30min。如果檢測酶為AP，可在底物溶液中加入左旋咪唑，AP檢測的內源性背景一般來說比POD檢測的低得多，因為在雜交過程中，樣品中內源性AP酶的活性基本都喪失了。
　　RNase處理：在DNA-DNA雜交實驗中，RNase的處理可去除內源性RNA，增加實驗的信噪比。在進行mRNA為靶標的檢測時，RNase處理的樣品也可作為質控對照。通常的處理方式是將DNase-free的RNase溶解于2×SSC(100μg/ml)，樣品在溶液中37℃處理60min。
　　SSC=150mMNaCl,15mM檸檬酸鈉溶液(pH7.4)
　　HCl處理：對樣本進行20-30min的200mMHCl處理，可將蛋白抽提，并將核酸序列進行一定程度的水解，增加雜交檢測的信噪比。
　　去垢劑處理：如果對樣品的固定、脫水、包埋等預處理過程不足以將脂膜成分破壞暴露核酸，可對樣品進行額外的蛋白去垢劑處理(如TritonX-100和SDS)。
　　蛋白酶處理：樣品中待雜交的核酸序列常與蛋白纏繞交聯在一起，樣品的固定步驟更是加劇了蛋白的交聯程度，因此預滲透是核酸雜交前的常規步驟，通常通過蛋白酶K的消化作用來完成。根據不同的文獻來源，蛋白酶K的工作濃度通常設為10-500μg/ml(溶解于20mMTris-HCl,2mMCaCl2,pH7.4,酶濃度可根據具體樣品進一步優化)，對樣品進行37°C7.5–30min的處理。染色體涂片或核片的蛋白酶K處理濃度可降至1μg/ml消化7.5min。也有文獻指出，福爾馬林固定石蠟包埋的組織切片樣品，使用胃蛋白酶（500μg/ml，溶于200mMHCl）將得到較好的蛋白消化結果。
　　對于結締組織，肝組織等樣品，還可進行Collagenase和Dispase的組織消化處理，以降低背景。
　　3.探針制備
　　在進行研究前，確定應用的探針類型。不同探針類型的優劣勢請見上文描述。DNA探針的制備包括了前期的DNA片段分離純化（或cDNA的克隆）和酶促探針標記，可選隨機引物標記法和缺口平移法等。RNA探針的制備包括了轉錄載體克隆和轉錄法探針標記。寡核苷酸探針的制備要求先獲得合成的寡核苷酸片段，再進行末端標記或加尾法探針標記。但無論采用何種標記探針及標記方法，對探針標記效果需進行最終的評估，并準確計算探針濃度。
　　4.原位雜交過程
　　雜交前可進行預雜交，以防止較高的背景染色。預雜交條件與雜交條件相同，只是預雜交液中不含探針和硫酸葡聚糖。
　　靶DNA的變性（對mRNA的原位雜交無需此步）
　　樣品DNA的變性在DNA-DNA雜交檢測中是必須的步驟，但同時可能會造成樣品形態學的部分破壞，此步是實驗中需要優化的一個步驟。常用的變性方法為堿變性和熱變性，實驗時可以摸索變性時間、變性溫度等參數以獲得最佳條件。
　　如使用熱變性方法，可在雜交時將探針的變性和樣品DNA變性同步進行：將樣品和探針溶液加蓋蓋玻片，置于烘箱80℃變性，染色體DNA樣品處理2min，后冷卻至37℃進行雜交。組織樣品DNA的變性時間可增加至80℃10min。
　　以上就是原位雜交檢測步驟